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專注于生物學試劑及試劑盒領域
服務熱線：18101056239
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產品型號：BC5670-50T/24S
更新時間：2024-04-23
廠商性質：生產廠家
訪 問 量 ：1191
010-50973130
產品分類
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組胺含量檢測試劑盒說明書
可見分光光度法
貨號：BC5670
規(guī)格：50T/24S
產品組成：使用前請認真核對試劑體積與瓶內體積是否一致，有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。
試劑名稱 | 規(guī)格 | 保存條件 |
提取液一 | 液體30 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
提取液二 | 液體5 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑一 | 液體45 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑二 | 粉劑×2支 | 2-8℃保存 |
試劑二稀釋液 | 液體5 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑三 | 液體12 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
粉劑一 | 粉劑3 g×1瓶 | 2-8℃保存 |
標準品 | 液體1 mL×1支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制：
1. 試劑二：臨用前一支試劑二加入65μL蒸餾水溶解，2-8℃可保存4周。
2. 試劑二工作液的配制：根據樣本量按照試劑二：試劑二稀釋液=10μL：300μL（共310μL，約3S）的比例配制，現(xiàn)配現(xiàn)用。
3. 標準品：10μmol/mL組胺標準液。
4. 0.1875μmol/mL標準品配制：取75μL10μmol/mL組胺標準液，加入925mL蒸餾水，混勻配制成0.75μmol/mL的組胺標準品；再吸取250μL 0.75μmol/mL組胺和750 μL蒸餾水混合配制成0.1875μmol/mL的組胺標準溶液備用。
產品說明：
組胺（Histamine）是一種有潛在危害的含氮低分子量有機化合物，是由組*在脫羧酶的作用下產生的。當組織受到損傷或發(fā)生炎癥和過敏反應時，都可釋放組胺。組胺廣泛存在于各種食品中，攝入過量的組胺會對人體產生危害。組胺會被組胺脫氫酶（HDH）特異性分解，在1-mPMS作用下，電子轉移通過WST顯色，在470nm下有最大吸收峰，據此可以計算組胺含量。
注意：實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。
需自備的儀器和用品：
可見分光光度計、低溫離心機、1mL玻璃比色皿、可調式移液槍、研缽/勻漿器、水浴鍋/恒溫培養(yǎng)箱、冰和蒸餾水。
操作步驟：
一、樣本處理（可適當調整待測樣本量，具體比例可以參考文獻）
1. 組織：按照質量（g）：提取液一體積（mL）為1：2.5~5的比例（建議稱取約0.2g，加入1mL提取液一）加入提取液一，冰浴勻漿后，于60℃水浴30min，冷卻至室溫后于4℃ 10000g離心10min，取0.8mL上清液，再緩慢加入0.15mL提取液二，緩慢吹打混勻至無氣泡產生，4℃ 10000g離心10min后取上清待測。
2. 紅酒等（酚類含量高）液體：稱取粉劑一0.05g，加入500μL液體樣本和500μL提取液一，冰浴勻漿后，于60℃水浴30min，冷卻至室溫后于4℃ 12000g離心10min，取0.8mL上清液，再緩慢加入0.15mL提取液二，緩慢吹打混勻至無氣泡產生，4℃ 10000g離心10min后取上清待測。
注：1、提取液二需緩慢加入，加入后會產生大量氣泡，建議使用2mL EP管進行操作。
2、樣本提取后盡可能在2小時內測定結束，若樣本量過多建議分批次處理。
3、含酚類高的樣本，前處理時加入粉劑一約0.05g，與樣本一起冰浴勻漿。如紅酒，前處理時取500μL液體樣本加入500μL提取液一，和粉劑一約0.05g（無需準確稱量），之后按照液體樣本繼續(xù)進行冰浴勻漿后等后續(xù)處理。
二、測定步驟
1、 可見分光光度計預熱30min以上，調節(jié)波長至470nm，蒸餾水調零。
2、 試劑一37℃預熱15min。
3、 操作表：（在1.5mLEP管中依次加入以下試劑）
試劑名稱（μL） | 測定管 | 對照管 | 空白管 | 標準管 |
試劑一 | 650 | 750 | 650 | 650 |
試劑二工作液 | 100 | - | 100 | 100 |
試劑三 | 150 | 150 | 150 | 150 |
蒸餾水 | - | - | 100 | - |
樣本 | 100 | 100 | - | - |
標準品 | - | - | - | 100 |
充分混勻，37℃避光反應15min，取反應液于1mL玻璃比色皿中，測定470nm處吸光值A，記為A測定、A對照、A空白、A標準，計算ΔA測定=A測定-A對照，ΔA標準=A標準-A空白?？瞻坠芎蜆藴使苤恍铚y1-2次。 | ||||
三、組胺含量的計算
1. 按照蛋白濃度計算
組胺含量（μmol/mg prot）=ΔA測定×C標準÷ΔA標準×V樣本÷（V樣本×Cpr）×F
=0.1875×ΔA測定÷ΔA標準×Cpr×F
C標準：標準管濃度，0.1875μmol/mL；V樣本：加入的樣本體積，0.1mL；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL，蛋白濃度需自行測定；F：稀釋倍數。
2. 按照樣本質量計算
組胺含量（μmol/g 質量）=ΔA測定×C標準÷ΔA標準×（V上清+V提取液二）÷（W×V上清÷V提取液一）×F =0.223×ΔA測定÷ΔA標準÷W×FC標準：標準管濃度，0.1875μmol/mL；W：樣本質量，g；V上清：提取時上清液體積，0.8mL；V提取液二：加入的提取液二體積，0.15mL；V提取液一：加入的提取液一體積，1mL；F：稀釋倍數。
3. 按照液體體積計算
組胺含量（μmol/mL）
=ΔA測定×C標準÷ΔA標準×（V上清+V提取液二）÷ [V液體×V上清÷（V提取液一+V液體）] ×F
=0.445×ΔA測定÷ΔA標準×F
C標準：標準管濃度，0.1875μmol/mL；V上清：提取時上清液體積，0.8mL；V提取液二：加入的提取液二體積，0.15mL；V提取液一：加入的提取液一體積，0.5mL；V液體：液體樣本體積，0.5mL；F：稀釋倍數。
注意事項：
1. 提取液一中含有蛋白質沉淀劑，因此上清液不能用于蛋白濃度測定。如需測定蛋白含量，需另取組織。
2. 如果樣本測定吸光值小于0.05或接近空白管吸光值，可適當增大樣本量，空白管和標準管也需要進行相應調整，注意同步修改計算公式。
3. ΔA測定大于1或者A測定大于1.5時，可用整理水稀釋樣本進行測定。
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