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當前位置:首頁產(chǎn)品中心生化檢測試劑盒-常量法谷胱甘肽系列BC0350-50T/48SGU胱甘肽 S- 轉(zhuǎn)移酶(GST)活性測定試劑盒

GU胱甘肽 S- 轉(zhuǎn)移酶(GST)活性測定試劑盒
產(chǎn)品簡介:

儲存條件
2-8℃
中文名稱
GU胱甘肽 S- 轉(zhuǎn)移酶(GST)活性測定試劑盒
有效期
6個月
單位

英文名稱
Glutathione S-transferase(GST) Activity Assay Kit
檢測方法
紫外分光光度法 Spectrophotometer
規(guī)格
50T/48S

產(chǎn)品型號:BC0350-50T/48S

更新時間:2025-08-25

廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家

訪 問 量 :4144

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產(chǎn)品介紹


GU胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶(GST)活性檢測試劑盒說明書
                                                                                紫外分光光度法
注意:本產(chǎn)品試劑有所變動,請注意并嚴格按照該說明書操作。
貨號:BC0350
規(guī)格:50T/48S
產(chǎn)品組成:使用前請認真核對試劑體積與瓶內(nèi)體積是否一致,有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。

試劑名稱規(guī)格保存條件
試劑一液體60 mL×1瓶2-8℃保存
試劑二液體55 mL×1瓶2-8℃保存
試劑三粉劑×12-8℃保存

溶液配制:
試劑三:臨用前加6 mL蒸餾水溶解,2-8℃保存4周。
產(chǎn)品說明:
GU胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶(glutathione S-transferase,GST)是一種具有多種生理功能的蛋白質(zhì)家族,主要存在于細胞質(zhì)內(nèi)。GST是體內(nèi)解毒酶系統(tǒng)的重要組成部分,主要催化各種化學物質(zhì)及其代謝產(chǎn)物與GSH的巰基共價結(jié)合,使親電化合物變?yōu)橛H水物質(zhì),易于從膽汁或尿液中排泄,達到將體內(nèi)各種潛在或具備毒性的物質(zhì)降解并排出體外的目的。因此,GST在保護細胞免受親電子化合物的損傷中發(fā)揮著重要的生物學功能。此外,因為GST具有GSH-Px活性,亦稱為non-Se GSH-Px,具有修復氧化破壞的大分子如DNA、蛋白質(zhì)等的功能。注意,GST催化的反應減少GSH含量,但是不增加*含量。
GST催化GSHCDNB結(jié)合,其結(jié)合產(chǎn)物的光吸收峰波長為340nm;通過測定340nm波長處吸光度上升速率,即可計算出活性。
注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。
需自備的儀器和用品:
紫外-可見分光光度計、低溫離心機、水浴鍋/培養(yǎng)箱、可調(diào)節(jié)移液器、研缽/勻漿器/細胞超聲破碎儀、1mL石英比色皿、冰和蒸餾水。
“具體操作步驟詳見“產(chǎn)品資料"附件"
注意事項:
1. 樣本處理等過程均需要在冰上進行,且須在當日測定酶活力;
2. 細胞中GST活性測定時,細胞數(shù)目須在300-500萬之間,細胞中GST的提取時可加試劑一后研磨或超聲波處理,不能用細胞裂解液處理細胞;
3. 若樣本測定吸光度大于1,建議樣本用蒸餾水稀釋,計算時結(jié)果乘以稀釋倍數(shù);
4. 測定反應的溫度對測定結(jié)果有影響,請將反應溫度控制在37℃。
實驗實例:

  1. 取0.1g月季花朵加入1mL試劑一進行冰浴勻漿,8000g,4℃離心10min,取上清,稀釋50倍置冰上待測,按照測定步驟操作,測得計算ΔA =A2測定-A1測定)-A2空白-A1空白)=0.647-0.587-0.591-0.539=0.008,按樣本質(zhì)量計算得:

GST活性(U/g 質(zhì)量)=0.23×ΔA÷W×50(稀釋倍數(shù))=0.92 U/g 質(zhì)量。

  1. 取0.1g小鼠肝臟樣本加入1mL試劑一進行冰浴勻漿,8000g4℃離心10min,取上清,稀釋500倍置冰上待測,按照測定步驟操作,測得計算ΔA =A2測定-A1測定)-A2空白-A1空白)=0.824-0.543-0.591-0.539=0.229,按樣本質(zhì)量計算得:

GST活性(U/g 質(zhì)量)=0.23×ΔA÷W×500(稀釋倍數(shù))=263.35 U/g 質(zhì)量。
相關發(fā)表文獻:

  1. Wensu Han,Yemeng Yang,Jinglin Gao,et al. Chronic toxicity and biochemical response of Apis cerana cerana (Hymenoptera: Apidae) exposed to acetamiprid and propiconazole alone or combined. Ecotoxicology. May    2019:28(4):399-411.(IF2.46)

  2. Zhi Zhou,Xiaopeng Yua,Jia Tang,et al. Systemic response of the stony coral Pocillopora damicornis against acute cadmium stress. Aquatic Toxicology. January 2018;(IF3.794)

  3. Le Guan,Muhammad Salman Haider,Nadeem Khan,et al. Transcriptome Sequence Analysis Elaborates a Complex Defensive Mechanism of Grapevine (Vitis vinifera L.) in Response to Salt Stress. International Journal of Molecular Sciences. December 2018;(IF4.183)

  4. Xing Wei,Xuejun Mo,Faliang An,et al. 2′,4′-Dihydroxy-6′-methoxy-3′,5′-*, a potent Nrf2/ARE pathway inhibitor, reverses drug resistance by decreasing glutathione synthesis and drug efflux in BEL-7402/5-FU cells. Food and Chemical Toxicology. September 2018;(IF3.775)

  5. Qiuli OuYang,Nengguo Tao,Miaoling Zhang. A Damaged Oxidative Phosphorylation Mechanism Is Involved in the Antifungal Activity of Citral against Penicillium digitatum. Frontier in Immunology. February 2018;(IF4.259)

  6. Chunsheng Li,Xianqing Yang,Ying Xu,et al. Cadmium detoxification induced by salt stress improves cadmium tolerance of multi-stress-tolerant Pichia kudriavzevii. Environmental Pollution. November 2018;(IF5.714)

  7. Xiao Hui Xu,Yinghui Guo,Hongwei Sun,et al. Effects of Phytase Transgenic Maize on the Physiological and Biochemical Responses and the Gut Microflora Functional Diversity of Ostrinia furnacalis. Scientific Reports. March 2018;(IF4.011)

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